Sugestões de
estudos direcionados a Genética.
Ementas de disciplinas sugeridas na formação do pesquisador.
GENÉTICA.
Carga horária: 30 horas – 2 créditos
Objetivos: Estudar os conceitos e definições associados ao
arcabouço teórico da genética, enfocando os principais avanços relacionados aos
genes, cromossomos e hereditariedade.
Ementa: Introdução a genética; bases citológicas da herança;
genética mendeliana; extensões da genética mendeliana, mapeamento cromossômico
em eucariontes; determinação do sexo e cromossomos sexuais; mutações
cromossômicas e herança extranuclear.
Bibliografia:
Alberts, B.; Johnson, A.; Lewis, J.; Raff, M.; Roberts, K.;
Walter, P. (2004) Biologia Molecular da Célula. 4ª ed. Artmed, Porto Alegre,
RS. 1584p.
Griffiths, A.J.F.; Wessler, S.R.; Lewontin, R.C.; Gelbart,
W.M.; Suzuki, D.T.; Miller, J.H. (2008) Introdução à Genética. 9ª ed. Guanabara
Koogan, Rio de Janeiro, RJ. 764p.
Klug, W.S.; Cummings, M.R.; Spencer, C.A.; Palladino, M.A.
(2010) Conceitos de genética. 9ª
edição.Artmed, Porto Alegre, RS. 863p.
Lewin, B. (2007). Genes IX. Oxford
University Press, Inc., New York.
Snustad, P. & Simmons, M.J. (2008) Fundamentos de
Genética. 4ª ed. Guanabara Koogan, Rio de Janeiro, RJ. 778p.
BIOLOGIA MOLECULAR
Carga horária: 60 horas – 4 créditos
Objetivos: A disciplina tem como objetivo principal
apresentar e discutir os fundamentos teóricos da Biologia Molecular,
proporcinando uma visão geral dos mecanismos moleculares envolvidos nos
processos biológicos.
Ementa: Estudo dos mecanismos moleculares envolvidos nos
processos de replicação do DNA, transcrição e processamento do RNA, síntese
protéica, endereçamento de proteínas, regulação da expressão gênica e elementos
de organização e funcionamento do genoma, tais como transposons, RNA de
interferência e regulação epigenética, Vias de Transdução de Sinal.
Bibliografia:
Lewin, B. Genes IX. Porto Alegre, Editora Artes Médicas,
2009.
Watson, J. D. et al. Biologia Molecular
do Gene, 5a ed. Artmed, 2006.
Artigos e revisões publicados em revistas especializadas.
SEMINÁRIOS EM GENÉTICA E BIOLOGIA MOLECULAR
Carga horária: 30 horas – 2 créditos
Objetivos: O objetivo da disciplina é desenvolver hábitos e
habilidades de interpretar, criticar e escrever artigo científico, dissertação
e tese. No primeiro semestre o estudante deverá realizar um seminário de uma
revisão bibliográfica, de tema livre, que será definido sob a supervisão do
orientador, extraído da respectiva linha de pesquisa. No segundo semestre o
estudante deverá apresentar o pré-projeto de pesquisa que dará origem ao
trabalho final da pós-graduação.
Ementa: Esta disciplina proporcionará um espaço de discussão
e troca de experiências onde os estudantes de pós-graduação poderão apresentar
seus trabalhos de pesquisa para a comunidade acadêmica.
Bibliografia: variável.
GENÉTICA EVOLUTIVA
Carga horária: 60 horas – 4 créditos
Objetivos: A disciplina tem como objetivo principal
apresentar e discutir os fundamentos teóricos da Genética de Populações e suas
aplicações para a Evolução e Biologia da Conservação, proporcionando uma visão
global dos mecanismos envolvidos na dinâmica dos genes nas populações naturais.
Ementa: Introdução à Genética de Populações; Equilíbrio de
Hardy-Weinberg; Desequilíbrio de ligação; Sistemas reprodutivos - Equilíbrio de
Wright-Fisher; Mutação; Deriva genética; Teoria da Coalescência; Teoria geral
da endogamia; Tamanho efetivo populacional; Medidas de parentesco; Fluxo
gênico; Seleção.
Bibliografia:
Allendorf, F.W.; Luikart, G. (2006)
Conservation and the genetics of populations. Blackwell Publishing, Oxford.
Gillespie, J.H. (2004) Population
Genetics: A Concise Guide. 2ª ed. Johns Hopkins University Press, Baltimore,
Maryland. 232p.
Hartl, D.L. (2008) Princípios de Genética de População. 3ª
ed. Ribeirão Preto: FUNPEC Editora, 217 p.
Hartl, D.L.; Clark, A. G. (2010) Princípios de Genética de
populações. 4ª ed. Porto Alegre: Artmed, 660 p.
Hedrick, P.W. (2004) Genetics of
Populations. 3ª ed. Jones and Bartlett Publishers, Sudbury, MA. 737p.
Ridley, M. (2006) Evolução. 3ª ed. ArtMed Editora, Porto
Alegre, RS. 752p.
Templeton, A. R. (2011) Genética de Populações e Teoria Microevolutiva,
SBG, Ribeirão Preto, SP, 705p.
Weir, B. (1996) Genetic Data
Analysis II - Methods for Discrete Population Genetic Data. Sinauer Associates
Inc., Sunderland, MA, USA.
EVOLUÇÃO MOLECULAR
Carga horária: 45 horas – 3 créditos
Objetivos: Estudar a evolução das macromoléculas, incluindo
as taxas e os padrões de mudanças evolutivas no DNA e em proteínas e os
mecanismos responsáveis pelas mudanças. Reconstruir a história evolutiva de
genes e organismos, por meio da filogenia molecular, a partir de dados
moleculares.
Ementa: Introdução à Evolução molecular, Evolução do genoma,
Modelos evolutivos; Estimativas de substituição nucleotídica; Teoria neutra de
evolução molecular; Relógio molecular e estimativas de tempos de divergência;
Teoria da coalescência; Filogenia molecular e reconstrução da história
evolutiva; Elementos transponíveis e transferência horizontal de genes.
Bibliografia:
Nei, M. (1987) Molecular
Evolutionary Genetics. Columbia University Press, New York, NY, USA. 512p.
Nei, M; Kumar S. (2000) Molecular
Evolution and Phylogenetics. Oxford University Press Inc. New York.
Li, W.H. 1997. Molecular Evolution.
Sinauer Associates, Sunderland, MA.
Kimura, M. 1968. Evolutionary rate
at the molecular level. Nature, 217:624-26.
Crow, J.F. & Kimura, M. (1970)
An Introduction to Population Genetics Theory. Harper & Row Publish. Inc.,
New York, NY, USA.
Hartl, D.L. & Clark, A.G. (2006)
Principles of Population Genetics. 4ª ed. Sinauer Associates, Sunderland, MA.
545p.
Ridley, M. (2006) Evolução. 3ª ed.
ArtMed Editora, Porto Alegre, RS. 752p.
Felsenstein J 2004 Inferrring
phylogenies. Sinauer Associates Inc., Sunderland, Massachussetts, USA.
Hein J, Schierup MH & Wiuf C
2005. Gene genealogies, variation and evolution. A primer on coalescent theory.
Oxford Univeristy Press, Oxford UK.
Hillis DM, Moritz C & Mable BK
1996. Molecular systematic. 2a ed. Sinauer Associates Inc., Sunderland,
Massachussetts, USA.
BIOLOGIA DA RELAÇÃO PATÓGENO-HOSPEDEIRO
Carga horária: 60 horas – 4 créditos
Objetivos: Disciplina teórica com objetivo de estudar
aspectos celulares e moleculares envolvidos na interação patógeno-hospedeiro,
com foco nos estudos de fatores de virulência que contribuem para
estabelecimento de infecções.
Ementa: Estudo de técnicas de análises funcionais para
determinação de fatores de virulência; técnicas de avaliação de adesão
molecular no processo de interação patógeno-hospedeiro; análises de captação de
micro e macronutrientes por patógenos; alterações metabólicas adaptativas de patógenos
durante processo de infecção.
Bibliografia:
Artigos científicos atuais publicados em periódicos
nacionais e internacionais.
METABOLISMO CELULAR
Carga horária: 60 horas – 4 créditos
Objetivos: A disciplina tem por objetivo capacitar os
participantes na compreensão dos processos metabólicos celulares e seus
mecanismos de regulação, dos mecanismos de integração metabólica, dos
conhecimentos básicos sobre a linguagem metabólica e do fluxo de energia
metabólica entre os seres vivos.
Ementa: Serão abordados aos estudantes conceitos básicos de
Metabolismo Celular. A disciplina descreve as reações químicas que regulam o
funcionamento das células, que são à base da vida. Nesse contexto, serão
apresentadas ao estudante as principais vias anabólicas e catabólicas,
responsáveis pelo funcionamento celular. Também serão abordados os princípios
de regulação metabólica dos seres vivos bem como a integração metabólica.
Bibliografia:
ALBERTS, B. Biologia Molecular da Célula - 5ª Ed. ArtMed. 2008.
STRYER, L., Bioquímica. 6 ed. Rio de Janeiro:
Guanabara Koogan.2006.
LEHNINGER, A. L., Princípios de Bioquímica. 4 ed. São Paulo:
SARVIER. 2006.
NELSON, D. AND COX, M. Princípios de Bioquímica de
Lehninger. 5 ed. São Paulo: Artmed. 2011.
ESTUDO FUNCIONAL DE GENOMAS
Carga horária: 40 horas – 3 créditos
Objetivos: A disciplina tem por objetivo apresentar um curso
teórico-prático envolvendo técnicas e abordagens utilizadas para atribuir
funções putativas aos genes seqüenciados, permitindo abordagem de estudos em
larga-escala da função dos genes. Estas análises fornecem uma imensa quantidade
de informações sobre um determinada célula, tecido, organismo em diferentes
condições fisiológicas.
Ementa: Técnicas de análise em larga-escala para inferência
de funções às proteínas: microarranjos de DNA, SAGE, análise do proteoma,
análise de interações entre proteínas, mutação de todo o genoma, identificação
do perfil metabólico por cromatografia/espectrometria de massa, além de
abordagens computacionais.
Bibliografia:
Artigos científicos atuais publicados em periódicos
internacionais da área.
GENÔMICA ESTRUTURAL
Carga horária: 60 horas – 4 créditos
Objetivos: A disciplina tem por objetivo apresentar de forma
crítica os conceitos e análises fundamentais das ciências genômicas: análises
de sequências de DNA, de variabilidade nucleotídica e de expressão gênica.
Capacitar os alunos a utilizarem, em suas pesquisas, diversas ferramentas
genômicas disponíveis na internet.
Ementa: Serão abordados os seguintes tópicos: Estrutura e
organização de genomas (procariotos e eucariotos); Novas e antigas metodologias
de sequenciamento genômico; Estratégias e ferramentas para a montagem
(“assembly”) de genomas; Estratégias e ferramentas para a anotação gênica dos
genomas; Análise da diversidade nucleotídica em nível genômico; Ferramentas e
análises de expressão gênica em nível genômico; Estratégias de genômica
integrativa.
Bibliografia:
Alberts B., Johnson A., Lewis J.,
Raff M., Roberts K., Walter P. (2004). Biologia Molecular da Célula. 4a ed.
Editora Artmed, Porto Alegre, RS. 1463 p.
Alonso, J. M. & Ecker, J. R.
(2006) Moving forward in reverse: genetic technologies to enable genome-wide
phenomic screens in Arabidopsis. Nat Rev Genet, 7, 7, 524-36.
Bentley, D. R., Balasubramanian, S.,
Swerdlow, H. P. et. al. (2008) Accurate whole human genome sequencing using
reversible terminator chemistry, Nature, 456, 7218, 53-9.
Gibson G., Muse S.V. (2010) A primer
of genome science. 3a ed. Sinauer Associates Inc., Sunderland, MA. 370 p.
Lewin B. (2009) Genes IX. Editora
Artmed, Porto Alegre, RS. 912 p.
Margulies, M., Egholm, M., Altman,
W. E. et al. (2005) Genome sequencing in microfabricated high-density picolitre
reactors Nature, 437, 7057, 376-80.
Metzker, M. L. (2010) Sequencing
technologies - the next generation. Nat Rev Genet, 11, 1, 31-46.
Nelson D.L., Lehninger A.L., Cox M.M. (2008) Lehninger:
princípios de bioquímica. 5a Ed. 1158 p.
NANOTECNOLOGIA APLICADA À GENÉTICA E BIOLOGIA MOLECULAR
Carga horária: 30 horas – 2 créditos
Objetivos: A disciplina tem como objetivo apresentar
conceitos e temas atuais em nanotecnologia relacionados com a sua aplicação
como ferramenta em genética e biologia molecular, colaborando para despertar a
criatividade científica pela integração de diferentes áreas do conhecimento.
Ementa: Conceitos e fundamentos da nanotecnologia,
nanobiotecnologia e nanomedicina. Tipos de nanopartículas. Aplicação dos
produtos em nanoescala em biologia molecular: transfecção, silenciamento
gênico, delivery de células tronco e siRNA.
Bibliografia:
Alberts B, Johnson A, Lewis J, Raff M, Roberts K e Walter P.
Biologia molecular da célula. 4ª ed. Artmed,
2004.
Torchilin, VP – Nanoparticulates as
drug carriers, Imperial Colege Press, 2006.
Mansoor, MA et al. – Nanotechnology
for cancer therapy. CRC, 2007.
Poole, JR et al. - Introduction to
nanotechnology. Hoboken, NJ: Wiley-Interscience, 2003.
Duran, N et al. - Nanotecnologia: introdução, preparo e
caracterização de nanomateriais e exemplos de aplicação. Artliber, 2006.
Artigos científicos em periódicos indexados.
PROTEÔMICA I
Carga horária: 60 horas – 4 créditos
Objetivos: A disciplina tem por objetivo a formação
teórico-prática, em espectrometria de massas, de alunos de pós-graduação. A
disciplina objetiva apresentar aos alunos conceitos básicos e metodologias
atuais em química de proteínas de modo que esses possam utilizá-las em seus
projetos de pesquisa.
Ementa: A disciplina habilitará o aluno tanto na
experimentação quanto no acesso à literatura específica em proteômica. Serão
abordados os seguintes tópicos: origem e tipos de análises proteômicas;
mecanismos utilizados para o preparo de amostras e ionização de moléculas;
processamento de dados de espectrometria de massas; interpretação dos espectros
de massas; sequenciamento de peptídeos; e aplicações da metodologia em
pesquisa, biotecnologia e indústria.
Bibliografia:
Baxevanis AD & Quellette BFF.
Bioinformatics. A pratical guide to the analysis of genes and proteins. John
Wiley Inc., USA, 2a ed., (2001).
Frank, RThe SPOT-synthesis technique
synthetic peptide arrays on membrane supports-principles and applications.
Journal of Immunological Methods. 267:13-26 (2002).
GE Healthcare: 2-D Eletrophoresis.
Principles and Methods. Handbook 80.6429-60AC.
Magalhães, A.D., Charneau, S., Paba,
J., Guércio, R.A.P, Teixeira, A.R.L., Santana, J.M., Sousa, M.V., Ricart,
C.A.O. Trypanosoma cruzi alkaline 2-DE: Optimization and application to
comparative proteome analysis of flagellate life stages. Proteome Science. 1-12
(2008).
O'Farrell, P.H. High resolution
two-dimensional electrophoresis of proteins. J. Biol. Chem. 250, 4007–4021
(1975).
Rashide HH & Buchler LK .
Bioinformatics. Basic applications in Biological Sciences and Medicine. CRC
Press, ed., Boca Raton USA, 1a ed., (2000).
Reyzer, M.L. & Caprioli,
R.MMaldi Mass Spectometry for direct tissue analysis: A new tool for biomarker
discovery. Journal of Proteome Research. 4:1138-1142 (2005).
Reyzer, M.L. & Caprioli, R.M.
MALDI-MS-based imaging of small molecules and proteins in tissues. Current
Opinion in Chemical Biology. 11:29-35(2007).
Rupp, S. Proteomics on its way to
study host-pathogen interaction in Candida albicans. Curr Opin
Microbiol.;7:330-335 (2004).
PROTEÔMICA II
Carga horária: 90 horas – 6 créditos
Pré-Requisito: Proteômica I
Objetivos: A disciplina tem por objetivo a formação
avançada, em análises de biomoléculas em larga escala, de alunos de
pós-graduação. A disciplina objetiva apresentar aos alunos novos conceitos e
metodologias de identificação e caracterização de biomoléculas e espectrometria
de massas de modo que esses possam utilizá-las em seus projetos de pesquisa.
Ementa: O curso capacitará o aluno na utilização de novas
tecnologias de análises globais qualitativas e quantitativas, bem como no
acesso à literatura específica de técnicas analíticas de biomoléculas. Serão
abordados os seguintes tópicos: preparo de amostras e ionização de moléculas;
utilização do LC-MS em análises globais, mecanismos utilizados para
quantificação espectral de biomoléculas, utilização de espectrometria de massas
nos estudos de estrutura de biomoléculas e aplicações das metodologias.
Bibliografia:
Gary Siuzdak. The expanding role of
mass spectrometry in biotechnology. Second Edition. 2006. MCC Press.
R. Kiser. Introduction to Mass
Spectrometry and Its Applications. 1965. ASMS Press.
Helsens K, Martens L, Vandekerckhove
J, Gevaert K. Mass spectrometry-driven proteomics: an introduction. Methods Mol
Biol. 2011;753:1-27.
Wuhrer M, Deelder AM, van der Burgt
YE. Mass spectrometric glycan rearrangements. Mass Spectrom Rev. 2011;
30:664-680.
Cox J, Mann M. Quantitative,
High-Resolution Proteomics for Data-Driven Systems Biology. Annu Rev Biochem.
2011; 80:273-299.
Schulze WX, Usadel B. Quantitation
in mass-spectrometry-based proteomics. Annu Rev Plant Biol. 2010; 61:491-516.
Kline KG, Sussman MR. Protein
quantitation using isotope-assisted mass spectrometry. Annu Rev Biophys.
2010;39:291-308. Review.
Valdes-Gonzalez T, Goto-Inoue N,
Hirano W, Ishiyama H, Hayasaka T, Setou M, Taki T. New approach for glyco- and
lipidomics--molecular scanning of human brain gangliosides by TLC-Blot and
MALDI-QIT-TOF MS. J Neurochem. 2011;116:678-83.
Li M, Zhou Z, Nie H, Bai Y, Liu H.
Recent advances of chromatography and mass spectrometry in lipidomics. Anal Bioanal Chem.
2011;399:243-9.
BIOINFORMÁTICA
Carga horária: 45 horas – 3 créditos
Objetivos: Apresentar aos alunos de forma crítica e
atualizada os conceitos de bioinformática e as aplicações de suas ferramentas
nas análises genômicas.
Ementa: A disciplina abordará os seguintes tópicos:
estratégias de sequencimento de genomas; Controle de qualidade dos dados de
sequencimento de ácidos nucléicos; Ferramentas de bioinformática para montagem
(“assembly”) dos genomas; Análises de dados de sequenciamento de nova geração;
Ferramentas para predição de genes e de sua estrutura; Ferramentas para
identificação de microssatélites e de polimorfismos (SNPs) nos genomas;
Ferramentas para desenho de oligonucleotídeos (“primers”); Utilização de bancos
de dados de sequências de DNA e proteínas; Anotação e análise de similaridade
de genes com o BLAST; Análise de dados de expressão gênica com microarranjos.
Bibliografia:
Baxevanis, A.D.; Ouellette, B.F.F.
(2001) Bioinformatics – A Practical Guide to the Analysis of Genes and
Proteins. 2ª ed. John Wiley & Sons Inc., New York, USA. 470p.
Gibas, C. & Jambeck, P. (2001) Desenvolvendo a
Bioinformática. Campus, Rio de Janeiro, RJ. 440p.
Golding, B. & Morton, D. (2000)
Elementary Sequence Analysis. Apostila. 164p.
Griffith, A.J.F.; Wessler, S.R.;
Lewontin, R.C.; Gelbart, W.M.;Suzuki, D.T.; Miller, J.H. (2006) Introdução à
Genética. 8ªed. Guanabara Koogan, Rio de Janeiro, RJ. 764p.
Lesk, A.M. (2002) Introduction to
Bioinformatics. Oxford University Press, New York, USA. 255p.
Prosdocimi, F.; (2002) Bioinformática: Manual do Usuário.
Biotecnologia, Ciência e Desenvolvimento 5(29):12-25.
Speed, T. (2003) Statistical Analysis of Gene Expression
Microarray Data. Chapman & Hall, Boca Raton, USA. 218p.
Tuimala, J. & Laine, M.M. (2003) DNA Microrray Data
Analysis. CSC - Scientific Computing Ltd.,
Helsinki, Finlândia. 161p.
GENÉTICA GEOGRÁFICA
Carga horária: 60 horas – 4 créditos
Objetivos: a disciplina tem por objetivo apresentar aos
alunos as diversas aplicações de estatística espacial em dados
genético-moleculares, principalmente no contexto de genética em escala de
paisagem e genética da conservação, e utilizar os diferentes pacotes
estatísticos disponíveis para análise espacial, especialmente o software SAM
(Spatial Analysis in Macroecology, ver www.ecoevol.ufg.br/sam) desenvolvido em
nosso laboratório para analisar esses dados.
Ementa: Padrões espaciais de variabilidade genética e
processos microevolutivos; Modelos de evolução; Simulação de evolução de
frequências alélicas no espaço; Estrutura populacional e conectividade
espacial; Índices de autocorrelação espacial; Correlogramas espaciais; Teste de
Mantel; Métodos de regressão espacial; Descontinuidade e barreiras ao fluxo
gênico.
Bibliografia:
Epperson, K. (2003). Geographical
Genetics. Princeton University Press, Princeton.
Hainning, R. (1990). Spatial Data
analysis in the social and environmental sciences. Cambridge, cambridge
University press.
Legendre, P. & Legendre, L.
(1998). Numerical Ecology. 2nd ed. Elsevier, Amsterdan.
Schabenberg, O. and Gotway, C. A.
(2005). Statistical methods for spatial data analysis. Chapman and Hall,
London.
Templeton, A.R. (2006) Population
Genetics and Microevolutionary Theory. John Wiley & Sons, Hoboken, NJ,
USA. 705p.
ESTATÍSTICA
Carga horária: 30 horas – 2 créditos
Objetivos: A disciplina tem como objetivo fundamental
capacitar os estudantes em planejamento amostral, desenho experimental, análise
exploratória de dados e inferência estatística.
Ementa: Introdução e história da bioestatística; Amostragem;
Estatísticas descritivas; Introdução à Amostragem; Teste de hipóteses; Teste z;
Teste t; Teste qui-quadrado; Intervalo de Confiança; Teste de hipóteses por
permutação; Introdução a cálculos estatísticos no Excel; Princípios de
Experimentação e Delineamentos Experimentais; Análise de Variância; Análise de
Correlação; Análise de Regressão; Análise de Covariância.
Bibliografia:
Gotelli, Nicholas J. & Ellison,
Aaron M. 2010. Princípios de Estatística em Ecologia. Artmed.
Cook, R. D. & Weisberg, S. 1982.
Residuals and Influence in Regression. Chapman and Hall.
Weisberg, S. 1985. Applied Linear
Regression. Wiley.
Chambers, J. M., Cleveland, W. S.,
Kleiner, B. & Tukey, P. A. 1983. Graphical Method for Data Analysis.
Chapman & Hall.
Sokal, R. R. & Rohlf, F. J.
1995. Biometry. Freeman.
Zar, J. H. 1999. Biostatistical
Analysis. Prentice Hall.
FERRAMENTAS MOLECULARES
Carga horária: 60 horas – 4 créditos
Objetivos: O curso abordará os conceitos necessários para a
compreensão das principais ferramentas moleculares utilizadas atualmente,
proporcionando ao aluno conhecimento para selecionar e empregar as técnicas
adequadas que melhor responderão as perguntas originadas de seus estudos. O
conhecimento dos fundamentos teóricos e da aplicabilidade das diversas técnicas
moleculares existentes é essencial para a escolha da ferramenta mais adequada
para cada situação. Serão abordadas estratégias de utilização e padronização de
diversas técnicas moleculares em diferentes situações, bem como a introdução de
estratégias de análise de dados obtidos por essas técnicas.
Ementa: Contextualização da Genética e da Biologia
Molecular. Conceitos fundamentais; Estrutura dos ácidos nucléicos e
cromossomos; Reação em Cadeia da Polimerase; A dinâmica da reação, reagentes e
seus variantes; Desenho de iniciadores e estratégias de padronização de
reações. PCR-Multiplex; PCR-SSCP; PCR-SSP; PCR in Situ; RT-PCR; PCR em tempo
real; Eletroforese de Ácidos Nucléicos; Conceitos físicos necessários; Dinâmica
da eletroforese e matrizes mais utilizadas; Marcadores moleculares STRs, RFLP,
RAPD, AFLP, VNTR, SNPs; SNP-Arrays; Sequenciamento de DNA (Sanger e segunda
geração); Micro-arranjos para estudo de expressão gênica; Citogenética
molecular (FISH, SKY, CGH, array-CGH, MLPA).
Bibliografia:
Tom Strachan e Andrew Read: Human
Molecular Genetics, 4th Ed., Garland Science, 2011
Benjamin Lewin: Genes IX, Artmed
Jeremy Squire: FISH (Fluorescent In
Situ Hybridization), Oxford University Press, 2002.
Artigos científicos de revistas internacionais indexadas.
DINÂMICA DA PRODUÇÃO E AVALIAÇÃO CIENTÍFICA
Carga horária: 45 horas – 3 créditos
Objetivo: o principal objetivo dessa disciplina é discutir
os principais aspectos da comunicação científica, colocando-o em um contexto
atual, eficiente e dinâmico. Espera-se que isso auxilie os alunos a aumentar
sua produção científica e sua eficiência de produção, tanto em termos
quantitativos quanto qualitativos.
Ementa: Introdução geral à filosofia científica e sociologia
científica; Produção científica; Métricas de avaliação (citação, estatística h,
índice de impacto); Redação e comunicação científica; Dinâmica da produção
científica (submissão, avaliação, componentes editoriais; revisão por pares).
Bibliografia:
Ford, E. D. 2000. Scientific Method
for Ecological Research. Cambridge University Press, Cambridge.
Godfrey-Smith, P. 2003. Theory and Reality. Chicago University
press, Chicago.
Hilborne, R. & Mangel, M. 1997.
The Ecological Detective. Princeton University Press, Princeton.
Pickett, S. T. A., Kolasa, J. &
Jones, C. G. 1994. Ecological Understanding. Academic Press, New York.
Valiela, I. 2001. Doing Science.
Oxford University Press, Oxford.
TÓPICOS ESPECIAIS EM BIOLOGIA MOLECULAR
Carga Horária: 30 horas – 2 créditos
Objetivo: Tópicos Especiais em Biologia Molecular tem por
objetivo abordar tópicos atuais na área de Biologia Molecular.
Ementa: Essa disciplina contempla a discussão de temas
relacionados à pesquisa em Biologia Molecular entre alunos e docentes das
diferentes linhas de pesquisa do programa. Serão convidados professores de
outras instituições para ministrarem aulas no curso. Dessa forma, deseja-se que
o aprendizado possa contribuir no desenvolvimento do trabalho de dissertação ou
tese dos alunos.
Bibliografia:
Livros e artigos científicos recomendados pelos docentes da
disciplina.
TÓPICOS ESPECIAIS EM GENÉTICA
Carga Horária: 30 horas – 2 créditos
Objetivo: Tópicos Especiais Genética tem por objetivo
abordar tópicos atuais na área de Genética.
Ementa: Essa disciplina contempla a discussão de temas
relacionados à pesquisa em Genética entre alunos e docentes das diferentes
linhas de pesquisa do programa. Serão convidados professores de outras
instituições para ministrarem aulas no curso. Dessa forma, deseja-se que o aprendizado
possa contribuir no desenvolvimento do trabalho de dissertação ou tese dos
alunos.
Bibliografia:
Livros e artigos científicos recomendados pelos docentes da
disciplina.
FARMACOGENÉTICA E FARMACOGENÔMICA
Carga Horária: 30 horas – 2 créditos
Objetivo: Compreender a evolução histórica e origem da
farmacogenômica; Entender os principais mecanismos para a variabilidade de
repostas a drogas; Discutir as principais técnicas e ferramentas utlizadas na
análise funcional, epidemiológica e molecular em farmacogenômica; Estimular a
integração multiprofissional para o planejamento e delineamento de um estudo
farmacogenômico e clínico.
Ementa: Serão abordados os fundamentos de farmacologia;
farmacogenética da biotransformação de medicamentos; farmacogenética de
populações; farmacogenética dos transportadores de medicamentos;
farmacogenética de receptores/alvos farmacológicos; aspectos éticos em
farmacogenômica; aplicações clínicas, desenvolvimento de novos fármacos e
perspectivas científicas. Tipos de polimorfismos e sua importância para a
farmacogenômica; haplótipos e bioensaios; desenhos experimentais e análise
estatística para estudos farmacogenéticos.
Bibliografia:
Evans WE, Johnson JA.
Pharmacogenomics: the inherited basis for interindividual differences in drug
response. Annu Rev Genomics Hum Genet. 2001;2:9-39.
Nebert DW. Extreme discordant
phenotype methodology: an intuitive approach to clinical pharmacogenetics. Eur
J Pharmacol. 2000;410:107-120.
Bertilsson L, Dahl ML, Dalen P, et
al. Molecular genetics of CYP2D6: clinical relevance with focus on psychotropic
drugs. Br J Clin Pharmacol. 2002;53:111-122.
Subramanian G, Adams MD, Venter JC,
et al. Implications of the human genome for understanding human biology and
medicine. Jama. 2001;286:2296-2307.
Meyer UA. Pharmacogenetics and
adverse drug reactions. Lancet. 2000;356:1667-1671.
Ingelman-Sundberg M, Oscarson M,
McLellan RA. Polymorphic human cytochrome P450 enzymes: an opportunity for
individualized drug treatment. Trends Pharmacol Sci. 1999;20:342-349.
McLeod HL, Evans WE.
Pharmacogenomics: unlocking the human genome for better drug therapy. Annu Rev
Pharmacol Toxicol. 2001;41:101-121.
Pirmohamed M, Park BK. Genetic
susceptibility to adverse drug reactions. Trends Pharmacol Sci.
2001;22:298-305.
Brookes AJ. The essence of SNPs.
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Mukherjee D, Topol EJ.
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Evans WE, Relling MV.
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Lindpaintner K. The impact of
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phenotyping/genotyping in patients receiving antipsychotics: useful aid to
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McCarthy JJ, Hilfiker R. The use of
single-nucleotide polymorphism maps in pharmacogenomics. Nat Biotechnol.
2000;18:505-508.
TÉCNICAS UTILIZADAS NO ESTUDO E PURIFICAÇÃO DE PROTEÍNAS
Carga Horária: 60 horas -2 créditos
Objetivo: Propiciar ao aluno um aprendizado sobre métodos
clássicos e atuais no estudo e purificação de proteínas.
Ementa: Características físico-químicas das proteínas.
Estratégias para
caracterização e purificação de proteínas. Técnicas cromatográficas em resinas
convencionais e em sistemas de alta performance – HPLC (exclusão molecular, de
fase reversa, por troca iônica, por afinidade, com íons metálicos imobilizados,
interação hidrofóbica). Eletroforese de proteínas simples, bidimensional e
capilar. Ultracentrifugação. Diálise e métodos de remoção de partículas para
purificação e concentração de proteínas.
Imunoquímica de proteínas. Critérios de pureza. Métodos para
quantificação de proteínas. Métodos para estudos da interação proteína-proteína.
Visualização celular de proteínas.
Bibliografia:
Scopes, R.K. “Protein Purification,
Principles and Practice” 3rd ed. Springer. (1993).
Rosenberg, I.M. “Protein Analysis
and Purification” 2nd ed. Springer. (2005).
Cutler, P. “Protein Purification
Protocols” in Methods in Molecular Biology vol. 244. 2nd ed. Humana Press
(2005).
Walker, J.M. “The Protein Protocols
Handbook” 3rd ed. Humana Press. (2009).
Artigos de revistas científicas como
“Journal of Biological Chemistry, Electrophoresis, Analytical Chemistry,
Methods in Molecular Biology, Methods in Enzymology e outras”.
MICROSSATÉLITES: EVOLUÇÃO E APLICAÇÕES
Carga Horária: 45 horas
Ementa:
Distribuição e abundância de regiões microssatélites no
genoma dos organismos. Evolução e mecanismos de mutação de regiões de DNA
repetitivo. Metodologias para o isolamento de regiões microssatélites do
genoma. Desenvolvimento e utilização de regiões microssatélites como marcador
molecular. Ferramentas básicas de bioinformática para a busca e desenho de
primers para regiões microssatélites. Genotipagem de marcadores
microssatélites. Transferibilidade de marcadores microssatélites. Aplicação dos
marcadores microssatélites em diferentes áreas da ciência.
Bibliografia:
Avise JC. 2004. Molecular markers,
natural history, and evolution. 2ªed. Sunderland: Sinauer.
Borém A. 2007. Biotecnologia Florestal. Viçosa: Editora UFV.
Borém A & Caixeta ET. 2006. Marcadores Moleculares. São
Paulo:Editora Independente.
Brondani RPV, Brondani C & Grattapaglia D. 2007. Manual
Prático para o Desenvolvimento de Marcadores Microssatélites em Plantas.
Brasília: Embrapa SCT.
Ferreira ME & Grattapaglia D. 1998. Introdução ao Uso de
Marcadores Moleculares em Análise Genética. Brasília: EMBRAPA – CENARGEN.
Goldstein BG & Schlotterer C.
1999. Microsatellites: Evolution and Applications. New York:Oxford University
Press.
Griffiths AJF, Wessler SR, Lewontin
RC, Gelbart WM, Suzuki DT, Miller JH. 2008 Introdução à Genética. 9ª ed. Rio de
Janeiro: Guanabara Koogan.
Hillis DM, Moritz C, Mable BK. 1996. Molecular Systematic. Massachusetts: Sinauer Associates.
Weising K, Nybom H, Wolff K, Kahl G.
DNA fingerprinting in plants: Principles, methods, and applications, 2ªed. CRC Press, Boca
Raton.
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